技術(shù)專(zhuān)欄
不同細胞,其培養環(huán)境不同,我們需要不斷地調整培養模式,從而達到上佳的細胞狀態(tài)。
ES 細胞培養
原代胚胎成纖維細胞(ME)的制備
1.取12.5-13.5dpc孕鼠,斷頸處死;
2.將鼠腹面向上放置,70% 酒精潤濕、消毒腹部(防止腹毛飛揚,污染內臟及子宮),剪開(kāi)皮膚層、肌肉層,打開(kāi)腹腔,將連接在子宮上的結締組織及脂肪剪去,將子宮取出,轉入無(wú)菌10cm平皿中;
3.把平皿轉入超凈臺;
4.用鑷子打開(kāi)子宮壁,擠出鼠胚,并與胚外組織、胎盤(pán)等分離,除去鼠胚的頭、四肢及各種內臟(主要為肝臟、肺臟、心臟和腸胃等);
5.將鼠胚移入另一新的無(wú)菌皿,用PBS洗三次;
6.棄去PBS,用彎頭剪將鼠胚剪碎,加入PBS洗至溶液基本無(wú)色(1-4次);
7.加入適量Trypsin-EDTA(0.25% Gibco 25520,下同),體積約等于組織塊體積;
8.用滴管輕輕吹勻,室溫下消化1-10分鐘(或消化至溶液渾濁變粘),加入與消化液等體積培養基,輕輕吹打混勻(5-10次),靜置;
9.沉降后將上部溶液輕輕吸出,轉入離心管中。
10.將細胞懸液管離心(1000轉5分鐘);
11.棄去上清,向沉淀中加入適量培養基,輕輕吹打重懸,將其分種至10 cm細胞培養皿,補加適量培養基,作標簽(ME-0;注意:若凍存,則可以使用復蘇后的0代ME制作Feeder;若直接使用則最好不用0代ME細胞做Feeder,要傳到一代以后再用來(lái)制作Feeder比較好),轉入培養箱培養;
12.視細胞生長(cháng)情況換液(一般3天換液一次),若細胞已長(cháng)滿(mǎn),則凍存,或者1:3-5傳代(視細胞疏密而定),放入培養箱繼續培養(此后不用再換液);1-5代的ME細胞均可用來(lái)制作Feeder。
飼養層細胞(Feeder)的制備
注:含10 ug/ml絲裂霉素C的DMEM血清培養基(FBS占10%)(實(shí)驗室所用MMC為10 mg/mL,Calbiochem)
1.棄去細胞培養皿中的培養液,加入適量含10ug/ml絲裂霉素C的培養基(DMEM+10% FBS);
2.放入培養箱培養3小時(shí)(2-4小時(shí));
3.用0.1% 明膠處理培養皿(將明膠加入,搖動(dòng)使明膠覆蓋全部皿底,然后吸出明膠棄去即可),室溫放置2小時(shí)以上,至皿底明膠干燥為止;
4.棄去含有絲裂霉素C的培養基,加入2-3 mL PBS,輕輕搖動(dòng),棄去PBS,如此洗3-5次(必須洗3次以上,以便徹底洗去殘存的絲裂霉素,絲裂霉素是有絲分裂抑制劑,因而對ES細胞有毒性);
5.加入適量胰酶消化30秒,吸去消化液,靜置至細胞層出現裂縫或明顯滑壁為止,加入培養基,吹打,種至明膠處理過(guò)的培養皿中即可(如細胞過(guò)稀,可再補加絲裂霉素處理過(guò)的細胞),半小時(shí)后即可使用(如果急用,則可以用ES細胞培養基終止消化,然后與ES細胞一起轉入明膠處理過(guò)的新板上),可使用6-10天,用前更換培養液(如未用明膠處理培養皿,則需在培養箱中放置2小時(shí)以上方可使用;最好是前一天下午制作Feeder,第二天上午使用,這時(shí)的Feeder狀態(tài)最好,最適于ES細胞貼壁生長(cháng),而且萬(wàn)一制作的Feeder在第二天早上發(fā)現出了問(wèn)題,還可以趕緊補做)。
ES細胞培養DMEM+15%FBS
2-巰基乙醇: 5.5uM 1000X Gibco 21985-023
L-谷氨酰胺: 2mM 100X Sigma G8540
LIF: 1000U/mL 10000X Chemicon ESGRO? (LIF); 10E7 units, 貨號:ESG1107
非必需氨基酸:100uM 100X Gibco 11140-050
雙抗: 100X Gibco 15070-063
ES細胞的復蘇細胞
1.提前制備好相應數量的Feeder;
2.準備37-39℃的熱水,從液氮罐中取出所需凍存管(凍存細胞),迅速投入熱水中,迅速劇烈搖動(dòng)直至凍存液全部融化;
3.轉入無(wú)菌間,1000轉/分鐘離心5-10分鐘;
4.棄上清,加入1 ml ES培養液輕輕吹打重懸,轉入鋪有飼養層細胞的培養皿中(凍存前細胞來(lái)自多大的培養皿,復蘇時(shí)就用相應大小的培養皿),補加適量培養液;
5.轉入培養箱培養,次日換液;此后每24小時(shí)換一次液,每48小時(shí)傳一次代(視生長(cháng)情況)。
ES細胞的換液
1.提前半小時(shí)左右將培養基從4℃冰箱取出,放于室溫(或者放于37℃溫箱內);
2.細胞培養皿從培養箱內取出,相差顯微鏡下作常規觀(guān)察(判斷生長(cháng)情況,并確證未發(fā)生污染)后轉入無(wú)菌操作臺內;
3.將ES細胞培養皿內的液體吸出、棄去,換新鮮培養基(6 cm培養皿約5 mL,3.5 cm培養皿約3 mL培養基;若死細胞較多則可以先用PBS洗一次,再加培養基);
4.放回培養箱繼續培養。
ES細胞的傳代
1.前一天下午做好所需數量的Feeder細胞板;
2.提前半小時(shí)左右將培養基從4℃冰箱取出,放于室溫(或者放于37℃溫箱內);
3.將ES細胞培養皿、Feeder細胞培養皿從培養箱內取出(相差顯微鏡下作常規觀(guān)察,Feeder細胞應生長(cháng)良好,細胞覆蓋95%左右,至少90%以上的培養皿面積);ES細胞應生長(cháng)良好,接近長(cháng)滿(mǎn)培養皿,細胞集落大小一致、疏密均勻,集落形狀規則、呈橢圓形、邊緣光滑、表面光滑,細胞生長(cháng)致密、核大、胞質(zhì)少;
4.將ES細胞培養皿內的液體吸出、棄去,用PBS 1 mL左右洗一遍,加入胰蛋白酶溶液,作用約30秒,小心吸出胰蛋白酶溶液,棄去;再作用1?5分鐘,不時(shí)觀(guān)察,待細胞層(皿底一層白色臟東西樣膜)出現裂縫并明顯開(kāi)始下滑時(shí),補加培養基,適度吹打(視消化程度及管口粗細而定,至看不到明顯的大的細胞團塊為止);平均分到Feeder培養皿中(滴加,以免將Feeder細胞吹脫落下來(lái)),滴加補加培養基至5 ml左右(滴加,以免將Feeder細胞吹脫落下來(lái);若為3.5cm培養皿,則補加至3ml左右),作好標簽;
5.前后左右水平晃動(dòng)培養皿,使ES細胞均勻分布于培養皿中,放入培養箱繼續培養。